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可离子化脂质结构中linker对LNP的理化性质、体内外表达和靶向性的影响

2025年03月27日 15:43 来源:迈安纳(上海)仪器科技有限公司
脂质纳米颗粒(LNPs)作为mRNA疫苗和治疗性mRNA的递送系统,展现出了巨大的潜力。然而,实现mRNA的靶向递送和高效表达仍是一大挑战。本研究聚焦于可电离脂质的设计,特别是其连接子部分的优化,旨在开发出能够特异性递送mRNA至肺部的LNPs。通过筛选一系列具有不同可降解连接子的可电离脂质,我们成功鉴定出几种能够显著改善LNPs肺部转染特异性的脂质,并进一步展示了其在治疗转移性肺癌模型中的有效性。



图片图一、示意图

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材料与方法


可电离脂质的设计与合成:我们设计并合成了一系列具有不同可降解连接子(如酯键、碳酸酯键、酰胺键和脲键)的可电离脂质。通过核磁共振(NMR)和质谱技术对这些脂质进行了表征,并评估了它们在乙醇和水/乙醇混合物中的稳定性。

LNP的制备与表征:采用微流控混合装置制备LNPs,并使用动态光散射(DLS)和zeta电位分析仪对LNPs的粒径、多分散指数(PDI)和zeta电位进行了表征。通过琼脂糖凝胶电泳评估了mRNA的封装效率。

体外与体内转染效率评估:在HeLa、RAW264.7和HepG2细胞系中评估了不同LNPs的体外转染效率。通过尾静脉注射LNPs至C57BL/6J小鼠体内,并使用生物发光成像技术评估了LNPs在主要器官中的分布和mRNA表达水平。

安全性评估:通过ELISA检测了小鼠血浆中细胞因子(如MCP-1、IL-6、TNF-α和IL-10)的水平,并使用血生化分析仪评估了肝功能标志物(如AST、ALT和ALP)的水平,以评估LNPs的体内安全性。

疗效评估:在转移性肺癌小鼠模型中评估了负载伪单胞菌外毒素A(mmPE)mRNA的LNPs的抗肿瘤疗效。通过测量肺重量、肺转移结节数和小鼠生存期来评估治疗效果。



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实验结果


2.1 可电离脂质的稳定性和LNP表征:

在评估了所设计的具有不同连接子的可电离脂质在乙醇和水/乙醇混合物中的稳定性后,我们发现酰胺(如lipid 34)和脲键(如lipid 35)连接子的脂质在这两种溶剂系统中均表现出较高的稳定性,未发生明显的水解。相比之下,含有酯键(如lipid 14)、反向酯键(如lipid 32)和碳酸酯键(如lipid 33)连接子的脂质在水/乙醇混合物中迅速降解。这些结果表明,酰胺和脲键连接子能够显著提高可电离脂质的化学稳定性,有利于LNPs的长期储存和应用。

通过微流体混合装置制备的LNPs,其粒径、多分散指数(PDI)和zeta电位等物理化学性质得到了详细的表征。结果表明,所有LNPs的粒径均在100 nm左右,PDI均小于0.1,显示出良好的单分散性。此外,含有酰胺和脲键连接子的LNPs具有正zeta电位,而含有酯键、反向酯键和碳酸酯键连接子的LNPs则具有负zeta电位。所有LNPs的mRNA封装效率均超过95%,进一步通过琼脂糖凝胶电泳确认了mRNA的完整封装和保留。



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图二、结构示意图和LNP理化性质的表征。


2.2 体外转染效率:


在HeLa、RAW264.7和HepG2细胞系中评估了不同LNPs的体外转染效率。结果显示,含有酰胺和脲键连接子的LNPs在所有测试的细胞系中均表现出较高的转染效率,尤其是在HeLa细胞中。在RAW264.7和HepG2细胞中,尽管最佳表现的LNPs略有不同,但总体上含有酰胺和脲键连接子的LNPs仍表现出较优的转染效。进一步的相关性分析表明,LNPs的zeta电位和pKa值与其体外转染效率呈正相关,而粒径大小则与转染效率无显著相关性。

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图三、体外细胞表达评价。


2.3 体内转染效率与生物分布:


通过尾静脉注射LNPs至C57BL/6J小鼠体内,并使用生物发光成像技术评估了LNPs在主要器官中的分布和mRNA表达水平。结果显示,含有酰胺和脲键连接子的LNPs能够特异性地递送mRNA至肺部,并在肺部细胞中实现高效表达。相比之下,含有酯键、反向酯键和碳酸酯键连接子的LNPs则主要在肝脏中积累。此外,肺部特异性LNPs(如lipid 35和lipid 36)在肺部与其他器官(如肝脏和脾脏)的mRNA表达比例上也显著优于其他LNPs。

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图四、体内表达和器官分布

为了更深入地了解LNPs在体内的细胞转染谱,我们使用Cre-tdTomato小鼠模型评估了不同LNPs在肺部不同细胞类型中的转染效率。结果显示,含有酰胺和脲键连接子的LNPs(如lipid 35和lipid 36)能够高效地转染肺部非免疫细胞(如内皮细胞和上皮细胞),同时也能够在一定程度上转染免疫细胞(如髓样细胞和树突状细胞)。相比之下,其他LNPs则未能在肺部细胞中实现高效转染。进一步的分析还表明,LNPs的zeta电位和pKa值与其体内肺部转染效率呈正相关。值得注意的是,尽管lipid 35和lipid 36在物理化学性质上非常相似,但lipid 35在肺部细胞中的转染效率显著高于lipid 36,这可能与LNPs的pKa值对体内生物分布和细胞摄取的微妙影响有关。

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图五、LNP的细胞水平表达和器官靶向分析

2.4 安全性评估:
单次静脉注射LNPs后,小鼠血浆中细胞因子(如MCP-1、IL-6、TNF-α和IL-10)的水平略有升高,但在24小时内迅速恢复至正常水平。此外,肝功能标志物(如AST、ALT和ALP)和组织病理学分析均未显示明显的毒性反应,表明所开发的LNPs具有良好的体内安全性。

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图六、安全性考察

2.5 疗效评估:
在转移性肺癌小鼠模型中,负载伪单胞菌外毒素A(mmPE)mRNA的LNPs显著降低了肺重量和肺转移结节数,并延长了小鼠的生存期。与商业化的SM-102脂质相比,优化后的lipid 35表现出更高的疗效,尤其是在延长小鼠生存期方面。这些结果表明,通过优化可电离脂质的连接子部分,可以开发出具有显著抗肿瘤疗效的LNPs递送系统。

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图七、LNP的药效评价

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讨论



本研究通过优化可电离脂质的连接子部分,成功开发出具有肺部特异性的LNPs。这些LNPs在体外和体内均表现出高效的转染效率和良好的安全性。此外,负载mmPE mRNA的LNPs在转移性肺癌小鼠模型中显示出显著的抗肿瘤疗效,进一步验证了其临床应用潜力。





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结论



本研究表明,通过优化可电离脂质的连接子部分,可以显著改善LNPs的肺部转染特异性。这种优化策略为开发针对肺部疾病的高效、安全mRNA递送系统提供了新的思路。未来,我们将进一步探索这些LNPs在其他肺部疾病治疗中的应用潜力。



参考文献:Somu Naidu, Gonna, et al. "Ionizable Lipids with Optimized Linkers Enable Lung-Specific, Lipid Nanoparticle-Mediated mRNA Delivery for Treatment of Metastatic Lung Tumors." ACS nano (2025).


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